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基因点突变细胞

人类有超过75000种疾病与遗传变异相关,其中大部分是单碱基突变。因此,构建基因点突变细胞株,在疾病的检测、研究与治疗中,具有巨大的应用潜力。例如点突变细胞株可用于神经疾病变性机制研究,小分子药物研发,肿瘤诊断与治疗,遗传性疾病诊断等。
点击查看相关服务:基因点突变载体构建

服务详情

细胞类型 各种细胞类型,包括肿瘤、常规、干细胞、原代和永生化细胞系。
服务类型 模型构建/基因治疗方向的点突变效率验证
交付标准 基因点突变单克隆细胞≥1株(2管细胞/株,1×10^6/管)
周期/价格 快至8周,16800元起   在线咨询
球盟会生物基因基于先导编辑PE (Prime Editing)技术全新研发的 Bingo™ 平台 ,可提供精准、高效的基因定点突变细胞定制服务。球盟会生物基因凝聚十多年基因编辑经验,在上千例基因编辑CRO项目经验中总结、优化、提升,成功率远超传统基因定点突变HDR系统。
 
Prime Editing的技术原理:利用一种融合了逆转录酶的Cas9 nickase(Cas9n-RT)和一种特殊的引导RNA——pegRNA,这种RNA不仅指导编辑酶到达目标DNA序列,还携带了需要插入或替换的遗传信息。在pegRNA的指导下,Cas9n-RT在目标DNA上产生一个单链切口,然后逆转录酶使用pegRNA作为模板合成新的DNA序列,从而实现精准的单碱基替换或小片段的插入和删除,而不需要双链DNA断裂,提高了编辑的精确性和安全性。
 
 
prime Editing的技术原理

 

服务优势

高效的编辑系统
基于Bingo™ 7的基因编辑策略,编辑效率和纯合概率大幅提高,可对难以编辑的位点实现有效编辑
高效pegRNA设计算法系统
独家开发的pegRNA设计算法,编辑效率可达90%,并无脱靶事件
增强型的Cas9n-RT编辑酶系统
优化后的Cas9n-RT,稳定性和编辑活性更强
高效的转染体系
独有的转染系统,效率是传统方法的10倍
高效的单克隆分选技术
3D打印技术辅助单克隆分选,1分钟即可完成铺板,细胞存活率是传统方法的3倍以上。并且每个克隆均有图像,确保是单一克隆
专业的技术支持团队
超过10年的基因编辑经验,可实现简单到复杂的编辑

服务类型

可根据客户需求、综合基因等情况,为客户设计点突变方案。
1 点突变细胞株模型构建
2 基因治疗方向应用的pegRNA效率验证
3 作为IVD用的生物来源标准DNA的原料

服务流程

Bingo™ 7 的技术优势

球盟会生物基因对基于prime editing技术开发的Bingo™ 平台进行迭代升级,正式推出Bingo™ 7,具有更高的编辑效率。

与 Bingo™5 相比,Bingo™7 的编辑效率有所提高
基因位点 Bing™ 5 编辑效率 Bing™ 7编辑效率 Bing™ 7相较Bing™ 5编辑效率提高倍数
LPIN1 2.67
JMID7 4.71
SEC23B 3.83
TMEM41A 2.87
ACE site 1 2.54
PPPIR12B site 1 2.85
PPP1R12B site 2 1.76
TFE3 2.71
NOS3 1.59
TAF6L 1.41
CERS2
1.36
IL4R site 1
1.36
TRIM41 1.23
ODC1 1. 39
KCNI12 site 2 1. 23
KCNJ12 site 1 1. 21
IL4R site 2 1.13
 
备注:  <10%,    20%-30%,   30%-40%,   50%-60%,   70%

 
2)在挑战性位点实现有效的编辑
Bingo™ 7高效的编辑效率,使那些挑战性的位点有了编辑的可能。我们对多个难以编辑的位点,分别使用Bingo™ 7和Bingo™ 5系统进行测试,结果显示Bingo™ 7可以对这些位点实现有效的编辑。这意着以前难以编辑的任务变得可行,为突破性研究创造了可能。
 
Bingo™5 编辑失败 Bingo™7 编辑成功的位点
基因位点 Bing™ 5 编辑效率 B Bing™ 7编辑效率
MMACHC targeting site 1
MMACHC targeting site 2
ACE targeting site 2
ACE targeting site 3
 
备注:  <10%,    20%-30%,   30%-40%,   50%-60%,   70%-100%

 
3)部分定点突变细胞Pool编辑效率
细胞类型 细胞Pool编辑效率
293T
Hela
AS49
HepG2
MDA-MB-231
HCT116
U20S
Ishikawa
R28
SN4741
 
敲除效率(%):  >21%-50%,   >51-80%,   >81
 

成功案例

● Ishikawa细胞MAPK7基因点突变(c.A599C)细胞株构建

1)项目信息

细胞名称
Ishikawa
基因
MAPK7(Gene ID: 5598)
突变位点
c.A599C
 
 

2)Bingo™PE系统质粒设计

Bingo™ pegRNA

Spacer

gagaactgtgagctcaagat

Extension

accaaagGcaccaatcttgagctcacagt

Bingo™ gRNA

gagccgagtgcatgtacttc

 
 

3)多克隆编辑效率

在多克隆阶段,进行编辑效率检测,结果显示编辑效率约为60%
 
Editing Efficiency Assays | EDITGENE
 
编辑效率检测
 
 

4)单克隆测序验证

顺利获得PCR及测序验证,确认单克隆已发生 c.A599C的编辑。
 
Monoclonalsequencing Peak Graph | EDITGENE
 
单克隆测序峰图
 

● Hela细胞HSPD1基因点突变(c.A391G)细胞株构建

1)项目信息

细胞名称
Hela
基因
HSPD1(GeneBank ID: 3329)
突变位点
c.A391G

2)Bingo™PE系统质粒设计

Bingo™ pegRNA

Spacer

ggcttcgagaagattagcaa

Extension

ttagcaccttCgctaatcttctcga

Bingo™ gRNA

agcttcttcatttgtgttat


3)编辑效率检测
Hela细胞HSPD1基因c.A391G位点细胞Pool编辑效率为71%,取得纯合突变单克隆细胞。
Editing efficiency assays
 
Hela细胞HSPD1基因c.A391G点突变细胞Pool Sanger测序结果
 
 
Editing efficiency assays
 
Hela细胞HSPD1基因c.A391G点突变单克隆细胞Sanger测序结果
 

 

● HCT116细胞EGFR基因点突变(c.2319_2320 ins CAC)细胞株构建

 

1)项目信息

细胞名称
HCT116
基因
EGFR(Gene ID: 1956)
突变位点
c.2319_2320 ins CAC

2)Bingo™ PE系统质粒设计

Bingo™ pegRNA

Spacer

GCCCAGCAGGCGGCACACGTG

Extension

GTGGACAACCCCCACcacGTGTGCCGC

Bingo™ gRNA

GCACcacGTGTGCCGCCTGCT


3)编辑效率检测
HCT116细胞EGFR基因点突变(c.2319_2320 ins CAC)细胞Pool Sanger测序结果。
Editing efficiency assays
 
 
HCT116细胞EGFR基因点突变多克隆细胞编辑效率为38%
Editing efficiency assays
 
 

 

● HCT116细胞GJB2基因点突变(c.35 ins G)细胞株构建

 

1)项目信息

项目信息
HCT116
基因
GJB2(Gene ID: 2706)
突变位点
c.35 ins G

2)Bingo™ PE系统质粒设计

Bingo™ pegRNA

Spacer

ACGCTGCAGACGATCCTGGG

Extension

TTTGTTCACAcCCCCCCAGGATCGTCTGCA

Bingo™ gRNA

GTGTTTGTTCACAcCCCCCC


3)编辑效率检测
HCT116细胞GJB2基因点突变(c.35 ins G)多克隆细胞测序结果。
Editing efficiency assays
 
 
HCT116细胞GJB2基因点突变多克隆细胞编辑效率为56%
Editing efficiency assays
 
 

Advantage and Characteristic

Optimazied Strategy
We have create a unique sgRNA Design Logic
Optimazied Strategy
We have create a unique sgRNA Design Logic
Optimazied Strategy
We have create a unique sgRNA Design Logic
Optimazied Strategy
We have create a unique sgRNA Design Logic

参考文献

Generation of Human Isogenic Induced Pluripotent Stem Cell Lines with CRISPR Prime Editing

随着人类分子遗传学和基因组学的开展,数千个与常见疾病风险相关的基因位点被识别出来,这些位点通常包含多个候选变异。然而大多数与疾病相关的变异是非编码的,这使得识别这些变异背后的分子机制变得困难。CRISPR技术的开展为靶向基因组编辑提供了更精确的方法,特别是prime editing,它可以介导几乎任何单核苷酸替换。因此许多研究员期望利用prime editing研究特定基因变异功能相关性中的应用并在多能干细胞中生成等基因系列,以控制遗传背景,同时评估因果等位基因的剂量效应。 在该文章中,研究员们开发了一种高效的CRISPR prime editing技术,用于在诱导多能干细胞(iPSC)中生成携带杂合或纯合等位基因的细胞系,并对prime editing技术进行优化。接着选择了与2型糖尿病(T2D)风险相关的六个单核苷酸变异(SNVs)进行编辑,并针对每个位点从遗传背景不同的人类供体衍生的iPSCs中进行编辑,顺利获得系列实验和对比评估编辑效率。研究结果表明,研究员们成功生成了27个编辑过的iPSC克隆,涵盖了6个与2型糖尿病或先天性高胰岛素血症(CHI)相关的SNVs。他们还发现,prime editing技术在iPSCs中的效率比在HEK293T细胞中更高。总的来说,这项研究展示了prime editing技术在生成特定遗传背景的iPSCs中的潜力,并为研究特定遗传变异对疾病影响提供了一个有力的工具。

Structural basis for pegRNA-guided reverse transcription by a prime editor

关于Prime editor如何识别pegRNA并与目标DNA相互作用的分子机制尚不清楚,限制了对Prime editing过程的理解和进一步的优化。为解决这个问题,研究人员在多种状态下测定了Prime editor的冷冻电镜(cryo-EM)结构,为理解这一创新的基因组工程系统提供了结构框架。 研究人员使用冷冻电镜技术(cryo-EM)对Prime editor复合体在不同状态下的结构进行了分析,包括预启动、启动、延伸和终止状态,成功取得了Prime editor复合体在多个状态下的高分辨率结构,揭示了其在引导逆转录过程中的动态变化;基于结构信息,研究人员设计了pegRNA变体和Prime editor变体,并对M-MLV RT进行截短和融合,成功开发了一种更小尺寸的Prime editor变体(PECO-Mini),它在保持编辑效率的同时,提高了AAV载体的滴度和Prime editing效率,活性测试结果显示工程化后的Prime editor变体在体外具有与原始Prime editor相当的活性。该研究揭示了Prime editor复合体在不同工作状态下的结构特征,为理解其分子机制提供了重要信息。

A truncated reverse transcriptase enhances prime editing by split AAV vectors

Prime editing是一种新型的基于CRISPR的基因组编辑技术,它不需要双链DNA断裂或外源性供体模板DNA,展现出在生物医学研究和基因治疗方面的巨大潜力。尽管Prime editing技术具有多功能性和精确性,但它在不同类型的编辑、目标位点和细胞类型中的效率存在很大差异。因此,为了实现更广泛的应用,需要提高Prime editing的效率。 研究人员筛选了11种不同来源的RT变体,使用GenScript算法优化其人类密码子,发现PE蛋白表达水平提高了1.4倍;顺利获得删除RNase H结构域和进一步缩短RT序列,创建多个截短的PECO变体,使Prime editor在保持编辑效率的同时长度减少了621bp;为了实现有效的双AAV传递PE,研究人员构建了基于不同Cas9分裂位点和intein的分裂PE系统,确定了Rma 573-574和674-675分裂位点,这两个位点与Rma intein结合使用时,显著提高AAV载体的滴度和Prime editor效率。顺利获得工程化改造和优化,研究人员成功提高了Prime editing技术的编辑效率,并且解决了AAV载体大小限制的问题,为未来的基因治疗和生物医学研究提供了一个更加有效和实用的工具。

Structural basis for pegRNA-guided reverse transcription by a prime editor

该文章解析了prime editing技术中pegRNA引导逆转录的结构基础。研究顺利获得高分辨率的结构分析,揭示了Prime Editor中的关键蛋白质,包括Cas9和逆转录酶的三维构象及其与pegRNA的相互作用。详细描述了pegRNA如何引导Prime Editor识别特定DNA序列并进行逆转录,将预定的基因序列插入目标位置。此外,研究还讨论了关键氨基酸残基在pegRNA结合和逆转录过程中的作用,解析了这些分子互动的精确机制。这一发现不仅深化了我们对Prime Editing机制的理解,还为优化和改进该技术提供了宝贵的结构信息,有助于其在基因治疗等领域的应用。

Ex vivo prime editing of patient haematopoietic stem cells rescues sickle-cell disease phenotypes after engraftment in mice

镰状细胞病(Sickle-cell disease, SCD)是一种由β-珠蛋白基因(HBB)中的一个A·T到T·A的点突变引起的常染色体隐性遗传病。现在,美国食品药品监督管理局(FDA)批准的唯一治愈SCD的方法是同种异体造血干细胞移植。然而,大多数患者缺乏理想的供体,并且该手术会导致严重的毒性。顺利获得校正患者自身的造血干细胞(HSCs),可以绕过免疫并发症,并消除对组织相容性供体的需求。现在,已有一些关于使用Cas9核酸酶启动的同源定向修复(HDR)和腺相关病毒类型6(AAV6)递送的DNA模板来校正SCD突变的临床试验研究正在进行中。 在该文章中,研究员们利用优化的prime editing系统对SCD患者造血干细胞和祖细胞(HSPCs)进行体外校正,顺利获得电穿孔将PEmax mRNA与合成的epegRNA和切割sgRNA结合使用,成功将SCD等位基因(HBBS)校正回野生型(HBBA),校正频率在15%到41%之间。之后,研究员们将经过启动编辑的HSPCs移植到免疫缺陷的小鼠体内,7周后,编辑的HSPCs在小鼠骨髓中维持了HBBA水平,并显示出与未编辑的健康供体HSPCs相似的植入频率、造血分化和谱系成熟。治疗效果评估发现,在移植后的小鼠中,平均42%的人红细胞前体和网织红细胞表达了HBBA,超过了预测的治疗益处水平。基因特异性分析也表明启动编辑系统具有高度的目标DNA特异性。最终研究结果证实了该技术手段的安全性和效率,具有长期效果和多克隆性。总结来说,这项研究展示了prime editing技术在治疗SCD中的潜力,证明了其在提高治疗效果和降低非目标编辑风险方面的有效性。

精选客户文章

IF=50.5
nature

全球超过一半的肝细胞癌(HCC)病例发生在中国,但现在针对中国人群中乙型肝炎病毒(HBV)相关HCC的全基因组分析研究非常有限。为了突破这种限制,研究人员启动了“中国肝癌图谱项目”(CLCA),旨在对中国人群中的HCC进行大规模的全基因组分析以理解其独特的发病机制和进化过程。该项目对494例HCC肿瘤样本进行了深度全基因组测序(平均测序深度为120×),并分析了匹配的对照血液样本,揭示了HBV相关HCC的详细基因组特征。研究发现,除了已知的编码区驱动基因(如TP53和CTNNB1)外,还存在6个新的编码区驱动基因(包括FGA)和31个非编码区驱动基因。此外,研究还揭示5种新的突变特征(包括SBS_H8),以及HBV整合形成细胞外环状DNA(ecDNA)的现象,这些ecDNA可导致癌基因扩增和表达增加。顺利获得功能验证实验,研究人员证实了FGA、PPP1R12B和KCNJ12等基因的突变能够显著影响HCC细胞的增殖、迁移和侵袭能力。这项研究结果不仅丰富了人们对HCC基因组学的理解,也为HCC的诊断和治疗提供了新的潜在靶点。

候选驱动因子概况

IF=27.4
Advanced material

肌腱损伤急性炎症期中,巨噬细胞过度激活会导致编码骨桥蛋白OPN的SPP1过表达,影响组织再生。CRISPR-Cas13由于具有RNA编辑和快速降解的能力,在组织修复方面具有巨大潜力,但缺乏合适有效的递送方法。对此,研究人员系统筛选了针对巨噬细胞的阳离子聚合物,开发了一种能够高效递送Cas13核糖核蛋白复合物(Cas13 RNP)进入巨噬细胞的纳米簇载体。顺利获得反应性氧种(ROS)响应性释放机制,该系统能够在肌腱损伤的急性炎症微环境中特异性抑制巨噬细胞中SPP1的过表达。实验结果表明,这种靶向策略显著减少了损伤诱导的SPP1产生巨噬细胞的出现,降低了成纤维细胞的激活,并减轻了肌腱周围的粘连形成。此外,该研究还揭示了SPP1顺利获得CD44/AKT信号通路促进成纤维细胞活化和迁移的机制,并顺利获得抑制这一通路有效缓解了肌腱损伤后的粘连问题。

用于PA治疗的巨噬细胞免疫微环境激活mRNA编辑策略的示意图

IF=12.8
Biomaterials

脊髓损伤(SCI)是一种导致感觉自主神经和运动功能的永久性损害的严重致残性疾病。干细胞疗法,尤其是间充质干细胞(MSCs),在SCI治疗中展现出巨大潜力但其再生能力有限,这限制了其在组织再生中的应用。研究团队观察到ABPCs衍生的EVs(EVsABPC)可能携带促进组织再生的生物活性信号,因此他们从鹿角芽基祖细胞(ABPCs)中提取并修饰了细胞外囊泡(EVsABPC),并将其应用于脊髓损伤(SCI)的治疗研究。研究人员发现EVsABPC能够显著增强神经干细胞(NSCs)的增殖,促进轴突生长,减少神经元凋亡,并顺利获得调节炎症反应将巨噬细胞从促炎的M1型极化为抗炎的M2型。此外,经过工程化改造的EVsABPC(顺利获得激活细胞穿透肽修饰)能够更有效地靶向SCI损伤部位,显著改善神经再生和运动功能恢复。这些结果表明,EVsABPC是一种极具潜力的SCI治疗候选方案。

图解摘要

IF=12.2
Journal of Hazardous Materials

S-异丙甲草胺(S-MET)是我国生产和使用量最大的除草剂之一,其化学特性导致其可在土壤中持久存在以及容易顺利获得淋溶和沉降污染地表水和地下水,最终影响植物生长和顺利获得食物链危害人类生命健康。鉴于现有检测方法的局限性和对高效分析技术的迫切需求,该研究以S-metolachlor为对象,利用哺乳动物表达系统生成相关重组抗体。在成功表达抗体的基础上,成功建立了基于这些抗体的免疫分析方法,用于监测环境水样中的S-异丙甲草胺残留。icELISA结果显示,重组抗体的灵敏度和特异性与亲本单抗相似,可保持原有的生物学活性,对于江水、农田水和自来水中的S-MET,具有良好的准确性和重复性。

图解摘要

IF=10.7
Biosensors and Bioelectronics

微小RNA(miRNA)是一类小的非编码RNA分子,顺利获得与特定靶基因的信使RNA(mRNA)相互作用来调控基因表达。miRNA在多种疾病的发生、开展过程中扮演着重要角色,被认为是极具潜力的疾病生物标志物。该研究利用CRISPR/Cas12a开发了一种为DBmRCA的新型miRNA检测技术。该技术利用无连接酶的哑铃探针和高灵敏度的CRISPR/Cas12a信号输出策略,实现了在30分钟内对miRNA的高精度定量分析。研究团队顺利获得临床样本验证了该技术的有效性,发现miR-200a和miR-126在肺癌组织中的表达水平显著降低,且该技术与传统方法结果一致。DBmRCA技术具有时间效率高、灵敏度强和操作流程简化等优点,为临床miRNA分析提供了一种可靠的工具,有望助力肺癌的早期诊断和治疗。

图解摘要

参考文献

DOI:10.1038/s41586-024-07054-3

全球超过一半的肝细胞癌(HCC)病例发生在中国,但现在针对中国人群中乙型肝炎病毒(HBV)相关HCC的全基因组分析研究非常有限。为了突破这种限制,研究人员启动了“中国肝癌图谱项目”(CLCA),旨在对中国人群中的HCC进行大规模的全基因组分析以理解其独特的发病机制和进化过程。该项目对494例HCC肿瘤样本进行了深度全基因组测序(平均测序深度为120×),并分析了匹配的对照血液样本,揭示了HBV相关HCC的详细基因组特征。研究发现,除了已知的编码区驱动基因(如TP53和CTNNB1)外,还存在6个新的编码区驱动基因(包括FGA)和31个非编码区驱动基因。此外,研究还揭示5种新的突变特征(包括SBS_H8),以及HBV整合形成细胞外环状DNA(ecDNA)的现象,这些ecDNA可导致癌基因扩增和表达增加。顺利获得功能验证实验,研究人员证实了FGA、PPP1R12B和KCNJ12等基因的突变能够显著影响HCC细胞的增殖、迁移和侵袭能力。这项研究结果不仅丰富了人们对HCC基因组学的理解,也为HCC的诊断和治疗提供了新的潜在靶点。

候选驱动因子概况

DOI:10.1002/adma.202311964

肌腱损伤急性炎症期中,巨噬细胞过度激活会导致编码骨桥蛋白OPN的SPP1过表达,影响组织再生。CRISPR-Cas13由于具有RNA编辑和快速降解的能力,在组织修复方面具有巨大潜力,但缺乏合适有效的递送方法。对此,研究人员系统筛选了针对巨噬细胞的阳离子聚合物,开发了一种能够高效递送Cas13核糖核蛋白复合物(Cas13 RNP)进入巨噬细胞的纳米簇载体。顺利获得反应性氧种(ROS)响应性释放机制,该系统能够在肌腱损伤的急性炎症微环境中特异性抑制巨噬细胞中SPP1的过表达。实验结果表明,这种靶向策略显著减少了损伤诱导的SPP1产生巨噬细胞的出现,降低了成纤维细胞的激活,并减轻了肌腱周围的粘连形成。此外,该研究还揭示了SPP1顺利获得CD44/AKT信号通路促进成纤维细胞活化和迁移的机制,并顺利获得抑制这一通路有效缓解了肌腱损伤后的粘连问题。

用于PA治疗的巨噬细胞免疫微环境激活mRNA编辑策略的示意图

DOI:10.1016/j.biomaterials.2022.121990

脊髓损伤(SCI)是一种导致感觉自主神经和运动功能的永久性损害的严重致残性疾病。干细胞疗法,尤其是间充质干细胞(MSCs),在SCI治疗中展现出巨大潜力但其再生能力有限,这限制了其在组织再生中的应用。研究团队观察到ABPCs衍生的EVs(EVsABPC)可能携带促进组织再生的生物活性信号,因此他们从鹿角芽基祖细胞(ABPCs)中提取并修饰了细胞外囊泡(EVsABPC),并将其应用于脊髓损伤(SCI)的治疗研究。研究人员发现EVsABPC能够显著增强神经干细胞(NSCs)的增殖,促进轴突生长,减少神经元凋亡,并顺利获得调节炎症反应将巨噬细胞从促炎的M1型极化为抗炎的M2型。此外,经过工程化改造的EVsABPC(顺利获得激活细胞穿透肽修饰)能够更有效地靶向SCI损伤部位,显著改善神经再生和运动功能恢复。这些结果表明,EVsABPC是一种极具潜力的SCI治疗候选方案。

图解摘要

DOI:10.1016/j.jhazmat.2021.126305

S-异丙甲草胺(S-MET)是我国生产和使用量最大的除草剂之一,其化学特性导致其可在土壤中持久存在以及容易顺利获得淋溶和沉降污染地表水和地下水,最终影响植物生长和顺利获得食物链危害人类生命健康。鉴于现有检测方法的局限性和对高效分析技术的迫切需求,该研究以S-metolachlor为对象,利用哺乳动物表达系统生成相关重组抗体。在成功表达抗体的基础上,成功建立了基于这些抗体的免疫分析方法,用于监测环境水样中的S-异丙甲草胺残留。icELISA结果显示,重组抗体的灵敏度和特异性与亲本单抗相似,可保持原有的生物学活性,对于江水、农田水和自来水中的S-MET,具有良好的准确性和重复性。

图解摘要

DOI:10.1016/j.bios.2024.116676

微小RNA(miRNA)是一类小的非编码RNA分子,顺利获得与特定靶基因的信使RNA(mRNA)相互作用来调控基因表达。miRNA在多种疾病的发生、开展过程中扮演着重要角色,被认为是极具潜力的疾病生物标志物。该研究利用CRISPR/Cas12a开发了一种为DBmRCA的新型miRNA检测技术。该技术利用无连接酶的哑铃探针和高灵敏度的CRISPR/Cas12a信号输出策略,实现了在30分钟内对miRNA的高精度定量分析。研究团队顺利获得临床样本验证了该技术的有效性,发现miR-200a和miR-126在肺癌组织中的表达水平显著降低,且该技术与传统方法结果一致。DBmRCA技术具有时间效率高、灵敏度强和操作流程简化等优点,为临床miRNA分析提供了一种可靠的工具,有望助力肺癌的早期诊断和治疗。

图解摘要

FAQ

什么是Prime Editing?
Prime Editing是一种新型基因编辑技术,能够在不引入双链DNA断裂的情况下实现精确的基因编辑。它拥有两个核心的组分,分别是pegRNA与PEmax基因编辑酶(Cas9n-RT)。pegRNA不仅能够定位目标序列,还包含要修改的碱基信息。pegRNA与PEmax基因编辑酶(Cas9n-RT)结合后组成编辑系统后,pegRNA引导PEmax到指定的编辑位点上,切断DNA的单链,并逆转录出pegRNA中的待修改序列,然后将该序列插入到目标基因组位置中,从而实现精准的单碱基替换或小范围的插入和删除。
传统的CRISPR/Cas9技术主要顺利获得在目标DNA上引入双链断裂,再利用细胞同源重组修复机制来实现基因编辑。这种策略有较多风险,如编辑效率和纯合概率低,容易导致随机的插入或缺失突变等。Prime Editing则不需要DNA双链断裂。Prime Editing具有Cas9n-RT编辑酶系统与pegRNA两个关键组分,可实现更为精确和安全的基因编辑,减少了脱靶效应。
球盟会生物基因全新升级第七代Bingo™ Prime Editing (PE7),优化编辑蛋白和RNA编辑活性。对比第五代PE技术,点突变成功率和基因编辑效率显著提升,全球知名院校博士专家团队一对一服务。
球盟会生物基因的Bingo™ Prime Editing 7(PE7)平台基于超过十年的基因编辑经验,结合成千上万个基因编辑CRO项目的总结、优化和提升,具有远超传统基因位点特异性突变系统的成功率。Bingo™ Prime平台采用高效的逆转录酶和精准的先导RNA设计,确保每一次点突变都能达到预期效果。

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